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Isabellaaaa
Nuovo Arrivato

Cittą: Salerno


13 Messaggi

Inserito il - 24 settembre 2007 : 18:38:30  Mostra Profilo  Visita l'Homepage di Isabellaaaa Invia a Isabellaaaa un Messaggio Privato  Rispondi Quotando
Ciao ragazzi!! La solita delucidazione..
Nella corsa elettroforetica su gel denaturante per RNA mi rimane l'etidio nei pozzetti e poi visualizzo una sola banda, MA PERCHE'? Sarą perchč devo aggiungere l'EtBr anche nell' RNA sample quando lo carico? S.O.S. vi prego se no la mia tesi nn va avanti!!!!! Grazie mille

GFPina
Moderatore

GFPina

Cittą: Milano


8408 Messaggi

Inserito il - 25 settembre 2007 : 17:47:20  Mostra Profilo  Visita l'Homepage di GFPina  Clicca per vedere l'indirizzo MSN di GFPina Invia a GFPina un Messaggio Privato  Rispondi Quotando
Io, come diceva anche Neuroscience nel tuo post precedente:
http://www.molecularlab.it/forum/topic.asp?TOPIC_ID=4704
lo mettevo solo nel buffer di caricamento!
Prova a vedere se cosģ č meglio.

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Isabellaaaa
Nuovo Arrivato

Cittą: Salerno


13 Messaggi

Inserito il - 26 settembre 2007 : 16:31:58  Mostra Profilo  Visita l'Homepage di Isabellaaaa Invia a Isabellaaaa un Messaggio Privato  Rispondi Quotando
Ti ringrazio tanto, proverņ cosģ... meno male che mi salvate!!!! Grazie mille
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Utente Junior



565 Messaggi

Inserito il - 26 settembre 2007 : 17:33:14  Mostra Profilo  Visita l'Homepage di lą Invia a lą un Messaggio Privato  Rispondi Quotando
ciao! non so' se per l'RNA č la stessa cosa, perchč non ci lavoro,
pero' quando faccio correre il DNA nel gel d'agarosio l'etidio lo metto nall'agarosio prima che solidifichi.
Perņ non so' se per l'RNA č la stessa cosa.
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GFPina
Moderatore

GFPina

Cittą: Milano


8408 Messaggi

Inserito il - 27 settembre 2007 : 14:52:01  Mostra Profilo  Visita l'Homepage di GFPina  Clicca per vedere l'indirizzo MSN di GFPina Invia a GFPina un Messaggio Privato  Rispondi Quotando
Citazione:
Messaggio inserito da lą

ciao! non so' se per l'RNA č la stessa cosa, perchč non ci lavoro,
pero' quando faccio correre il DNA nel gel d'agarosio l'etidio lo metto nall'agarosio prima che solidifichi.
Perņ non so' se per l'RNA č la stessa cosa.



No non č proprio la stessa cosa, per il DNA va benissimo mettere l'etidio nel gel, mentre per l'RNA č meglio colorare dopo il gel o metterlo nel campione.
Se servisse qua trovate un protocollo!

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Neuroscience
Utente



659 Messaggi

Inserito il - 27 settembre 2007 : 15:48:17  Mostra Profilo  Visita l'Homepage di Neuroscience Invia a Neuroscience un Messaggio Privato  Rispondi Quotando
Il fatto che vedi solo una banda nell'RNA... indica poche cose che puoi facilmente verificare con i tuoi occhi.

1) potrebbe essere la manda 28S, l'altra non la vedi perché gią vedi a malapena la 28S, e l'altra banda č meno intensa
2) l'RNA č degradato e vedi una sola banda un po' grossa e con i contorni un po' sfumati.

Con tutta probabilitą č la seconda, verifica con i tuoi occhi.


P.S.: per l'RNA č meglio non aggiungere l'editio nel gel denaturante poiché l'etidio+formaldeide dą una fluorescenza diffusa nel gel che confonde un po' l'analisi della qualitą/quantitą dell'RNA.

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Neuroscience
Utente



659 Messaggi

Inserito il - 27 settembre 2007 : 15:53:47  Mostra Profilo  Visita l'Homepage di Neuroscience Invia a Neuroscience un Messaggio Privato  Rispondi Quotando
altra cosa che č capitata anche a me, č proprio la fuorescenza di etidio che rimane nei pozzetti.

Questa cosa la risolsi semplicemente lavando BENE i pettinini del gel, dato che spesso da me venivano usati anche per i gel a DNA e quindi si arricchivano di volta in volta di etidio ad ogni gel fatto.

Credo che l'etidio si fissava a dello sporco presente sul pettinino che poi si rilasciava sul gel durante la solidificazione, quindi rimaneva una fluorescenza nel pozzetto.

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Isabellaaaa
Nuovo Arrivato

Cittą: Salerno


13 Messaggi

Inserito il - 17 ottobre 2007 : 12:54:10  Mostra Profilo  Visita l'Homepage di Isabellaaaa Invia a Isabellaaaa un Messaggio Privato  Rispondi Quotando
Vi ringrazio tantissimo, ho risolto usando l'etidio solo nei sampler e lavando i pettini!! Grazie smack smack
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